Efecto de la temperatura sobre el semen criopreservado de dos genotipos bovinos del Bos Indicus
Palabras clave:
acrosoma, inseminación, genotipo, plasmática, supervivenciaResumen
El presente trabajo evaluó la criopreservación a -196°C, la descongelación y la aplicación del semen, en 33 ganaderías bovinas del Magdalena Medio y se estudió, in vitro, el efecto de los errores encontrados sobre la supervivencia e integridad de las membranas espermáticas. La recolección de información en fincas se realizó mediante formulario específico. El estudio in vitro se ejecutó en el laboratorio de Biotecnología Reproductiva Animal del Instituto Universitario de la Paz (Barrancabermeja, Colombia), y consistió en someter pajillas comerciales de 0.5 ml de toros Braman y Gyr a la técnica instrumental convencional y a tres modificaciones de la misma (errores frecuentes), en un diseño completamente al azar. En ninguna de las fincas evaluadas se aplicó correctamente la práctica de la inseminación artificial (IA). Los errores más frecuentes y notorios fueron: el exceso de tiempo utilizado para la extracción de la pajilla del termo de almacenamiento, la descongelación de la pajilla en la axila y la no combinación correcta entre tiempo y temperatura. No existió diferencia significativa (P>0.01) entre los tratamientos evaluados para la supervivencia (S), la integridad acrosómica (MAN) y la integridad estructural de la membrana plasmática (MPN). No obstante toman relevancia los resultados porcentuales respecto al tratamiento convencional, los cuales, fueron los únicos que estuvieron por encima de las medias establecidas como mínimas en favor de la capacidad fecundante del semen. Los valores más bajos para supervivencia, integridad y resistencia de membranas correspondieron al semen del genotipo Brahman. Los resultados evidenciaron, en el genotipo Gyr, una mayor resistencia a la injuria y a la acción deletérea por efecto de la criopreservación y por efecto de las fallas en el manejo de la temperatura en el momento de la descongelación de la pajilla.
Citas
AGA Fano S.A. (2005). Hoja de seguridad del material. Fábrica Nacional de Oxígeno , 6. Colombia.
Almquist, J. O. (1982). Effect of thawing time on fertility of bovine spermatozoa in frech straws. 824-827. (J. D. Science, Ed.)
Angell, D. N. Efecto de la preparación espermática previo a la fertilización in vitro sobre la menbrana plasmática y el adn de semen bovino sexado. CES. Medicina Veterinaria y Zootecnia , 4, 29-37.
Ávila, L. Fundamentos de criopreservación. Revista Colombiana de Obstetricia y Ginecología , 57, 291-300.
Barth, A. C. (2002). Factors Affecting breeding soundness classification of beef bulls examined at the Westrn college of Veterinary Medicine.
Canadian Veterinary Journal , 43, 43. Canadian.
Barth, A. (16 al 19 de Agosto de 2000). Curso de evaluación de toros y control de la calidad seminal. 1, 55. Córdoba, Argentina: Universidad Catolica de Argentina.
Bernardi, S. F., Allende, R., Mazzeo, R., Monti, J., & Marini, P. R. (2011). Evaluación de los cambios ocasionados en espermatozoides bovinos en el manejo de la dosis durante su manipulacion en inseminación artificial. Invet (2) , 13, 25-38.
Berndtson, W. E. (1978). Thecniques for the cryopreservation and fiel handling of bovine spermatozoa. In: N. A. o.Sciences (ed).
Bollwein, H., Fuchs, I., & Koess, C. (2008). Interrelationship Between Plasma Membrane Integrity, Mitochondrial Membrane Potential and DNA Fragmentation in Cryopreserved Bovine Spermatozoa. Reproduction Domestic. Animal. , 2 , 43, 189-195.
Brackett, B. G. (1975). Capacitation of rabbit spermatozoa in vitro. Biology of Reproduction , 12 , 260-274.
Brouwn, J. L., L., S. P., & Hillers., a. J. (1982.). Influence of thawing time and post-thawing temperature on acrosomal maintenance and motility of bovine spermatozoa frozen in .5 ml french straws. Journal Animal Science , 54 , 938-944.
Cabrera, P., & Pantoja, A. (2012). Viavilidad espermática e integridad del acrosoma en semen congelado de toros Nacionales. Inv Vet Peru. , 23 (2), 192-200.
Catena, M., & Cabodevila, J. (1999). Evaluación del semen congelado. Taurus 1 , 18-31.
Correa, J. R., M. C. RODRIGUEZ, D., J., P., & ZAVOS., A. P. (1996). Thawing and proccesing of cryopreserved bovine spermatozoa at various temperatures and their effect on sperm viability, osmotic shock and sperm membrane functional integrity. Theriogenology 46 , 413-420.
Diaz, O., H. Mesa, G., Gòmez, D. F., & Henao, J. (2009). Evaluación invitro de la viabilidad del semen porcino hasta 120 horas de almacenamiento en refrigeración. Veterinaria y Zootecnia , 3, 32-37.
Drobnis, E. e. (1993). Cold shock damage is due to lipid phase transitions in cell membranes: A demostration using sperm as a model. , J Exp Zool 19 , 432-437.
Estevez, S., Sharma, R., Thomas, A., & Agarwal, A. (2000). Inprovement in motion characteristic and acrosome status in cryopreserved human spermatozoa by swim-up processing before freezing. Human Reprod. 15 , (10), 2173-2179.
Fields, M. J., & Cornelisses, K. M. (1982). Aspects of the sexual development of Brahman vs Angus bulls IN Florida. Theriogenlogy , 18, 18-31.
Foote, R. H. (2002). The history of artificial insemination: Selected notes and notables. Journal of Animal Science 80 , 1-10.
Gomez, M. V., & Migliorisi, a. A. (2009). Protocolo para la evaluacion de semen en rumiantes. Facultad de Ciencias Veterinarias. Universidad Nacional de la Plata: 9.
Grub, M., & Wattiaux., M. (2006). Curso de inseminación artificial.
Hafez, E. S. (2002). Reproduccion e inseminacion artificial en animales. Mexico.
J, T., J, G., & et ál. (1999). Relationship between the proportion of capacitated spermatozoa present in frozen-thawed bull semen and fertility with artificial insemination. Int J Androl , 22 (6) , 73-366.
Januskauskas, A., Johannisson, A., Soderquist, L., & Rodríguez-Martínez, H. (2000). Assessment ofsperm characteristics post-thaw and responde to calcium ionophore in relation to fertility in Swedish dairy AI bulls. Theriogenol. 53: , 859-875.
Looper, M. (2000). Proper semen handling iomproves conception rates of dairy cows. Extension Dairy Specialist Guide D: , 1-4.
Madrid-Bury, N. (2004). Relación entre los métodos de valoración seminal in vitro y la fertilidad in vivo del semen descongelado de toros frisones. 1-164 pp. Madrid, España: Universidad Complutense de Madrid, España. División de Estudios de Postgrado. Facultad de Veterinaria. Tesis Doctoral.
Maxwel, V., & Johnson, L. (1999). Physiology of spermatozoa at high dilution rates: the influence of seminal plasma. Theriogenology (8) , 52, 1353-62.
Mayer, D. T., Squiers, C. D., Bogart, R., & Oloufa., M. M. (1951). The technique for characterizing mammalian spermatozoa as dead or living by differential staining. The techJournal Animal Science 10: , 226-235.
Mazur, P. (1984). Freezing of living cells:mechanisms and implications. American Journal of Phisiology 247, 142-145.
Mendoza, J. A., Dulin, P., & Warrent., T. (2000). The Lower Hydrolyisis of ATP by the Stress Protein GroEL Is a Major Factor Responsible for the Diminished Chaperonin Activity at Low Temperature. Criobiology 41:, 319-323.
Nebel, R. L. (1997). Thechniques for Artificial Insemination of cattle whith frozen-thawed semen. In: R. S. Youngquist (ed.) Current therapy in large animal theriogenology No. 1., 251-256. Saunders, USA.
Nur, Z., Kamuran, I. I., & AK., K. (2006). Effects of different temperature treatments applied to deep stored bull semen on post-thaw cold shocked spermatozoa. Bulletin of Veterinary (50) , Institute Pulawy, 79-83.
Pace, M. M., Sullivan, J. J., Elliott, F. I., Graham, E. F., & Coulter., G. H. (1981). Effects of thawing temperature, number of spermatozoa and spermatozoal quality on fertility of bovine spermatozoa packaged in 5 ml french straws. Journal Animal Science 53 , 693-701.
Parks, J., Lee, D., Huang, S., & Kaproth, M. (2003). Prospects for spermatogenesis in vitro. Theriogenology , 59, 73-86.
Pérez-Llano, B., Lorenzo, J. L., Yenes, P., Trejo, A., & García-Casado, P. (2001). A short hypoosmotic swelling test for the prediction of boar sperm fertility. Theriogenology 56 , 387-398.
Pickett, B. W., Berdtson, W. E., & Sullivan, J. J. (1978). Influence of seminal additives and packaging systems on fertility of frozen bovine spermatozoa. Journal of Animal Science , 47 , 12-47.
PICKETT, B. W., BERNDTSON, W. E., & SULLIVAN, J. J. (1978). Influence of seminal additives and packaging systems on fertility of frozen bovine spermatozoa. Journal of Animal Science , 47 , 12-47.
Prathalingam, N. S., Watson, P. F., & S. G. Revell, J. B. (2007). The response of bovine spermatozoa to bicarbonate an its use to asses the influence of added oviductal epithelial proteins on cryopreservation. Journal of Andrology , 28 , 407-415.
Prathalingam, N., Holt, W., Revell, S., Jones, S., & Watson, P. (2005). Dilution of spermatozoa results in improved viability following a 24h storage period but decreased acrosome integrity following cryopreservation. Animal Reproduction Science 91 (1-2) , 11-22.
Revell, S. G., & Mrode, R. A. (1994). An osmotic resistance test for bovine semen. Animal Reproduction Science , 36 , 77-86.
Risopatron, J., Sánchez, R., Sepulveda, N., Villagran, E., & Peña, P. (1994). Seleccion de espermatozoides de bovino desde semen congelado-descongelado.Comparacion de dos metodos. Archivos de Medicina Veterinaria , 26 , 25-40.
Rodríguez, O. L., Berdtson, W. E., Ennen, B. D., & Pickett, B. W. (1975). Effect of rates of freezing, thawing and level of glycerol on the survival of bovine spermatozoa in straws. Journal Animal Science , 41 , 129-136.
Roncoletta, M., Morani, E. S., & et ál. (2006). Fertilityassociated proteins in Nelore bull sperm membranes. Animal Reproduction Science , 91 (1-2) , 77-87.
Rubio, L., & González, A. A. (2009). Efecto de la criopreservación sobre la integridad de la membrana plasmática y acrosomal de espermatozoides de toros. Revista Científica , FCV-LUZ , 19, 382-389.
Rubio-Guillén, J., González, D., González, Y., Madrid, N., & Quintero, A. (2007). ¿Puede el ORT complementar las pruebas clásicas de valoración seminal y predecir la fertilidad en toros? Arch. Latinoam. Prod. Anim , 15 (1) , 329.
Saacke, R. (2003). Fertilidad del toro: una opinion sobre su estado actual y perspectivas. Taurus, Bs.As , 5 , 18-28.
Schroeder, H. (1999). Fisiopatología reproductiva de la vaca. Universidad Nacional de Colombia , Facultad de medicina veterinaria, Santa fe de Bogotá. Santa fe de Bogotá, Colombia.
Seidel, J. G.-2. (2006). Modifyng oocytes and embryos to improve their cryopreservation. Theriogenology , 65 , 228-235.
Spitzer, J. (2000). Evaluacion de la salud reproductiva del toro: estado actual. Recuperado el 2015, de International Veterinary Information Service: www.ivis.org
Tortolero, I., Arata, G., Osuna, J. A., Gomez, R., & Regadera, J. (2005). Estres oxidativo y funcion espermatica. Venez Endocrinol Metab , 3, 12-19.
Villa, N. (2010). Evaluación del Efecto de la Técnica Instrumental Sobre la Calidad del Semen Bovino, Congelado-Descongelado, en el Centro de Colombia. Trabajo de Maestría, Universidad de Caldas. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Manizales, Caldas, Colombia.
Watson, P. F. (2000). The causes of reduced fertility with cryopreserved semen. Animal Reproduction Science , 60 , 481-492.
Woods, E., Benson, J., Aagca, Y., & Crister., J. (2004). Fundamental criobiology of reproductive cells and tissues. criobiology , 48, 146-156.
Zekariya, N. K. (2006). Effects of different temperature treatments applied to deep stored bull semen on post-thaw cold shocked spermatozoa. Bull Vet Inst Pulawy , 50 , 79-83.
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Este obra está bajo una licencia de Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 3.0 Unported.